Новосибирский государственный университет
студент
Воронина Елена Николаевна, кандидат биологических наук, научный сотрудник Института Химической Биологии и Фундаментальной Медицины
УДК 618.3-06
Актуальность
Повышенное тромбообразование и нарушение тонуса маточно-плацентарных сосудов в акушерской практике является одной из значимых причин развития осложнений беременности. Различают наследственные и приобретенные факторы риска развития этих осложнений.
К первой группе относятся наследственные формы тромбофилии и генетически обусловленная дисфункция эндотелия, которые, согласно литературным данным, имеют место в патогенезе более 30% всех гестационных осложнений [1,2, с.6]. В эту группу попадают наиболее грозные, определяющие четверть в структуре материнской смертности: преэклампсия, эклампсия и отслойка плаценты [3, с.6].
Все исследуемые осложнения ьвляются следствием снижения кровотока в маточно – плацентарных сосудах, приводя к нарушению имплантации, плацентации и дальнейшего развития плодного яйца.
Целью работы являлось определение роли следующих полиморфизмов в развитии осложненного течения беременности: G20210A FII, rs1799963; G1691A FV, rs6025; 5G/4G 675 PAI-1, rs1799768; C677T MTHFR, rs1801133; G634C VEGF, rs2010936; Glu298Asp еNOS, rs1799983.
Материалы и методы
Для проведения исследования были выбраны следующие группы: основная группа (n=257) и контрольная (n=190). В первую группу включались женщины с патологией беременности (преэклампсия, преждевременная отслойка плаценты, декомпенсированная фетоплацентарная недостаточность, синдром потери плода). Для устранения других причин развития гестационных осложнений были установлены критерии исключения из экспериментальной группы: врожденные пороки развития репродуктивной системы, тяжелая урогенитальная инфекция, декомпенсация хронических экстрагенитальных заболеваний, эндометриоз, миома матки, аномалии хромосомного набора плода при проведении кариотипирования, антифосфолипидный синдром.
В группу контроля вошли здоровые женщины, родившие живого доношенного ребенка с оценкой по шкале Апгар 8–10 баллов и не имеющие акушерской патологии. Предпочтение отдавалось женщинам, имеющим двух и более детей.
Все женщины, включенные в исследуемые группы были пациентками лечебно-диагностического центра - ООО «Клиника профессора Пасман» города Новосибирска. Генотипирование проводилось на базе Института химической биологии и фундаментальной медицины СО РАН.
В обеих группах проводился забор венозной крови. ДНК выделяли методом фенол – хлороформной экстракции с последующим осаждением этанолом [4, с.6].
Типирование полиморфных локусов G20210A FII, G1691A FV, 5G/4G 675 PAI-1, C677T MTHFR, G634C VEGF, Glu298Asp еNOS проводили методом ПЦР в режиме реального времени с использованием технологии конкурирующих TaqMan-зондов. Общий объем реакционной смесисоставлял 25 мкл, содержащей 40-100 нгДНК, 300 нМ прямого и обратного праймера (представлены в табл.1); по 100 нМTaqMan-зондов, коньюгированных с FAM или HEX; 200 мкМdNTP, амплификационный буфер, термостабильную Taq-полимеразу – 1 ед. акт. /реакц. Амплификация проводилась с помощью амплификатора CFX-96 (Bio-Rad, США) в следующих условиях: начальная денатурация 3 мин при 96°С; затем 50 циклов, включающих денатурацию при 96°С – 8 сек, отжиг праймеров и последующую элонгацию при 60°С – 40 сек. [5,6, с.7]. Интерпретацию результатов проводили с помощью анализа графиков накопления флюоресценции по соотношению значений флюоресценции в диапазонах эмиссии красителей FAM и HEX.
Таблица 1. Структуры праймеров для проведения генотипирования
Ген |
Полиморфный локус |
Последовательность праймеров |
|
|
Прямой |
Обратный |
|||
FII |
G20210A |
5’-GGTTCCCAATAAAAGTGACTCTCATC-3’ |
5’-CATCTTTAATGCCTGTAAATTCGAC-3’ |
|
FV |
G1691A |
5’-GTAAGAGCAGATCCCTGGACAGTC-3’ |
5’-GCAGTGATGGTACTGATAAAAATCG-3’ |
|
MTHFR |
C677T |
5’-GTTACCCCAAAGGCCACCC-3’ |
5’-GGAAGAATGTGTCAGCCTCGAAG-3’ |
|
PAI-1 |
5G/4G 675 |
5’-TGCAGCCAGCCACGACGTGATTGTCTA-3’ |
5’-AAGCTTTTACCATGGTAACCCCTGGT-3’ |
|
VEGF |
G634C |
5’-CTTGCCTTGCTGCTCTACC-3’ |
5’-CACACAGGATGGCTTGAAG-3’ |
|
еNOS |
Glu298Asp |
5’-TGGCTGGTACATGAGCACTGAGAT-3’ |
5’-CACGTTGATTTCCACTGCTGCCTT-3’ |
Соответствие частот генотипов равновесию Харди – Вайнберга проверяли с помощью критерия χ2. Достоверность различий частот аллелей и генотипов в исследуемых группах оценивали с помощью критерия χ2 с учетом поправки Йетса. Статистически значимыми считались различия при р<0,05. Для оценки величины относительного риска использовали отношение шансов (OR) с его доверительным интервалом (C.I.) при уровне доверия 95 %. Вычисления производили с помощью программы DeFinetti на сайте Института генетики человека (Мюнхен, Германия,).
Результаты и обсуждение
Частоты встречаемости генотипов всех исследуемых полиморфизмов соответствуют закону Харди – Вайнберга и представлены в табл.2.
Таблица 2. Частоты аллелей и генотипов исследуемых полиморфизмов в экспериментальных и контрольных группах
Группа |
Частота встречаемости аллеля (n) |
Частота встречаемости генотипа (n) |
Соответствие закону Харди-Вайнберга (χ², df=1), р (Pearson) |
|||
Полиморфный локус G20210A гена II фактора |
||||||
|
G |
A |
G/G |
G/A |
A/A |
|
Контроль |
0,989(376) |
0,011 (4) |
0,979(186) |
0,021 (4) |
0,005 (0) |
0.883417 |
Группа риска |
0,963 (495) |
0,037 (19) |
0,934 (240) |
0,058 (15) |
0,0078 (2) |
0.3862 |
Полиморфный локус G1691А гена V фактора |
||||||
|
G |
A |
G/G |
G/A |
A/A |
|
Контроль |
0,984 (374) |
0,016 (6) |
0,968 (184) |
0,032(6) |
0 (0) |
0.824988 |
Группа риска |
0,965 (496) |
0,035 (18) |
0,934 (240) |
0,062 (16) |
0,004 (1) |
0.206190 |
Полиморфный локус С677T гена MTHFR |
||||||
|
С |
Т |
С/С |
С/Т |
Т/Т |
|
Контроль |
0,679 (258) |
0,321 (122) |
0,468 (89) |
0,421 (80) |
0,111 (21) |
0.63749 |
Группа риска |
0,621 (319) |
0,379 (195) |
0,389 (100) |
0,463 (119) |
0,148 (38) |
0.788879 |
Полиморфный локус 675 5G/4G гена PAI-1 |
||||||
|
5G |
4G |
5G/5G |
5G/4G |
4G/4G |
|
Контроль |
0,684 (260) |
0,316 (120) |
0,474 (90) |
0,421 (80) |
0,105 (20) |
0.723761 |
Группа риска |
0,572 (294) |
0,428 (220) |
0,337 (87) |
0,465 (120) |
0,194 (50) |
0.457141 |
Полиморфный локус G634C гена VEGF |
||||||
|
G |
C |
G/G |
G/C |
C/C |
|
Контроль |
0,792 (301) |
0,208(79) |
0,621 (118) |
0,342(65) |
0,037 (7) |
0.593425 |
Группа риска |
0,731 (377) |
0,269 (139) |
0,531 (137) |
0,399(103) |
0,070 (18) |
0.819370 |
Полиморфный локус Glu298Asp гена eNOS |
||||||
|
Glu |
Asp |
Glu/Glu |
Glu/Asp |
Asp/Asp |
|
Контроль |
0,721 (274) |
0,279 (106) |
0,521 (99) |
0,400 (76) |
0,079 (15) |
0.937961 |
Группа риска |
0,679 (349) |
0,321 (165) |
0,444 (114) |
0,471 (121) |
0,085 (22) |
0.199454 |
Мутация гена протромбина G20210A
Для гена II фактора нами были обнаружены статистически значимые различия между контрольной и экспериментальной группой в частотах встречаемости аллелей (χ²=6,09; p=0,01357). Риск развития акушерской патологии при наличии аллеля А, приводящего к возрастанию концентрации протромбина в крови в несколько раз, увеличивается в 3,3 раза (OR=0,179; C.I.=0,056-0,569) [7, с.7]. Частоты встречаемости мутации протромбина в обеих группах выше среднепопуляционных. Это может быть обусловлено тем, что в популяционных исследованиях используется смешанная выборка из мужчин и женщин, и не проводится какой-либо отбор по наличию/отсутствию заболеваний.
Мутация Лейдена G1691А гена V фактора свертывания крови заключается в замене гуанина на аденин в позиции 1691. Она приводит к резистентности V фактора к расщепляющему действию протеина С, в результате чего уменьшается скорость инактивации протромбиназного комплекса и возрастает количество тромбина [8, с.7]. Ассоциаций между наличием этой мутации и развитием гестационных осложнений выявлено не было. В данной работе исследуемая группа состояла из женщин с различными нарушениями протекания беременности. При выделении подгруппы с преэклампсией, состоящей из 98 женщин, было показано, что при наличии мутации Лейдена риск развития преэклампсии возрастает в 3,4 раза (χ²=5,94; p=0,01478; O.R.=3,351; C.I.=1,200-9,362). Это подтверждает литературные данные: по данным метаанализа из 47 статей была установлена ассоциация лейденской мутации с развитием тяжелой и умерненной преэклампсии [9, с.7].
Полиморфный локус С677T гена MTHFR
MTHFR является ключевым ферментом фолатного цикла, приводя к образованию активной формы фолиевой кислоты. Аллель Т локуса С677T гена MTHFR, наличие которого приводит к снижению активности фермента метилентетрагидрофолатредуктазы, вызывает повышение уровня гомоцистеина в крови, что приводит к повреждению эндотелия и нарушению микроциркуляции [10,11, с.7]. Однако в нашем исследовании было показано, что полиморфный локус С677T гена MTHFR не приводит к развитию акушерской патологии.
Полиморфный локус 675 5G/4G гена PAI-1
Для гена PAI-1 статистически значимые различия между группами наблюдались в распределении как аллелей (χ²=11.68; p=0.00063), так и генотипов (χ²=8,34; p=0.00387). Для женщин, имеющих генотип 4G/4G, риск развития осложнений по сравнению с генотипом 5G/5G увеличивается в 2,6 раз (O.R.=2,586; C.I.=1,424-4,696), в то время как у гетерозигот – в 1,8 раз. Развитие осложнений связывают с тем, что присутствие аллели 4G сопровождается повышением экспрессии гена и увеличением концентрации PAI-1 в крови, что приводит к снижению активности системы фибринолиза и увеличению содержания фибрина в сосудистом русле, в том числе и в маточно - плацентарных сосудах [12, с.7].
Полиморфный локус G634C гена VEGF
Для гена сосудисто-эндотелиального фактора роста (VEGF) было показано наличие ассоциаций аллели С с развитием патологического течения беременности (χ²=4,49; p=0.03402). Это наблюдается за счет развития вазоконстрикции, повышения сосудистой проницаемости и нарушения процессов неоангиогенеза [13,14, с.7].
Полиморфный локус Glu298Asp гена eNOS
Полиморфизм гена эндотелиальной NO-синтазы приводит к уменьшению содержания оксида азота, являющегося основным вазодилататором, что сопровождается усилением вазоконстрикции. В литературе описаны ассоциации этого полиморфизма с развитием ишемической болезни сердца, гипертонической болезни [15,16, с.7]. Нами не было выявлено ассоциаций полиморфизма гена eNOS с развитием патологии беременности. По данным Беспаловой С.Н. и соавт., полиморфизм этого гена приводит к развитию преэклампсии, однако его связь с развитием прочих осложнений не установлена [9, с.7].
Выводы
В результате проведенной работы выявлены ассоциации аллелей 20210A гена протромбина, 634C гена VEGF, аллели 4G полиморфного локуса 5G/4G 675 гена PAI-1 с развитием осложнений беременности, обусловленных развитием тромбофилии и дисфункции эндотелия. Обнаружение генетических маркеров позволяет определить группу женщин с высокой вероятностью развития акушерской патологии и вовремя начать соответствующую терапию, включающую применение низкомолекулярных гепаринов, избегая патологического течения беременности [17, с.7].
Описанные выше полиморфизмы генов MTHFR, еNOS, FV не приводят к развитию гестационных осложнений.
Рецензии:
20.05.2017, 13:54 Розыходжаева Гульнора Ахмедовна
Рецензия: Статья посвящена актуальной проблеме. Оформлена по правилам оформления оригинальных научных работ. Материал статистически обработан. Выводы вытекают из проделанной авторами работы. Статья рекомендуется к печати.
21.05.2017, 17:17 Манин Константин Владимирович
Рецензия: Данная статья является актуальной по данному направлению. В статье прослеживается взаимосвязь течения беременности, заболеваемость матери и плода с генетическими особенностями пациенток. Однако одну фразу в начале надо изменить, так как складывается впечатление, что данная проблема (генетическая предрасположенность к болезням) характерна только для России. Статья выполнена в соответствии с требованиями. Я бы рекомендовал данную статью к печати.
Комментарии пользователей:
Оставить комментарий